Российский химико-аналитический портал  химический анализ и аналитическая химия в фокусе внимания ::: портал химиков-аналитиков ::: выбор профессионалов  
карта портала ::: расширенный поиск              
 


ANCHEM.RU » Форумы » 1. Аналитический форум ...
  1. Аналитический форум | Список форумов | Войти в систему | Регистрация | Помощь | Последние темы | Поиск

Форум химиков-аналитиков, аналитическая химия и химический анализ.

Определение жирных кислот в биоматериале >>>

  Ответов в этой теме: 13
  Страница: 1 2
  «« назад || далее »»

[ Ответ на тему ]


Автор Тема: Определение жирных кислот в биоматериале
OYura
Пользователь
Ранг: 45

14.01.2011 // 14:25:22     
Работаю на ГХ Кристалл 2000М, капиллярная колонка НР 52 м. Определяю жирные кислоты в маслах.
Необходимо провести анализ ЖК в мембранах клеток. Такого никогда не делал .
Как правильно провести экстракцию? Может у кого есть методики по этому поводу. Помогите пожалуйста.
ANCHEM.RU
Администрация
Ранг: 246
virtu
VIP Member
Ранг: 2136


14.01.2011 // 14:47:00     
Смотрите в журналах биохимической направленности, типа Analytical Biochemistry и т.д. Вам нужно подходящий протокол "выделения" плазматических липидов найти, а дальше, как "обычно".

Посмотрите еще здесь:

lipidlibrary.aocs.org/lipids/whatdo/index.htm

Еще на molbiol.ru загляните.
OYura
Пользователь
Ранг: 45


15.01.2011 // 18:10:24     
Гексан:метанол 2:1 подойдет для экстракции липидной фракции?
LVD
Пользователь
Ранг: 219


17.01.2011 // 9:34:47     
Да. Можно смесь хлороформ-метанол-вода в соотношении (2:1:0.8 v/v/v) ну и антиоксидант (напр. ионол) не помешает.
Chamomillablue
Пользователь
Ранг: 1302


17.01.2011 // 21:20:49     
Редактировано 3 раз(а)

Если вы намереваетесь исследовать липиды мембран, а именно входящие в их состав жирные кислоты, то необходимо провести количественную двухстадийную экстракцию в токе аргона смесями хлороформ:метанол:вода и хролоформ:метанол:соляная кислота с 0,001% ионола в т.н. "аппарате Жукова" - даже для стеклодува средней руки его конструкция не составит особого труда [1]. Данный метод, при всей его трудоёмкости - экстракция занимает несколько часов - обеспечивает количественный выход липидов на уровне 99,73% (мой личный "рекорд") (экстрагируемость оценивали путём прямого омыления неэкстрагируемого остатка растительной ткани в экстракторе в присутствии маргариновой кислоты в качестве IS).
Так как нам неизвестен ваш объект, то рекомендую полученный экстракт дополнительно "почистить" от триацилглицеринов и прочих неполярных липидных фракций с помощью ТСХ или на колонке на окиси алюминия - вы получите фракцию "полярных" липидов (стеринов, фосфоглицеринов и т.д.) [2] вот ее-то и подвергайте омылению с последующим метилированием свободных жирных кислот и ГЖХ, ГХ-МС анализам [3,4, 5] )
Так это выглядит в общих чертах,
нужны подробности - с удовольствием поделюсь )

PS
1. Zhukov A.V., Vereshchagin A.G. Quantitative content of total polar lipids in soybean seeds // J. Amer, Oil Schem Soc. 1976. Vol. 53, p 1-7
2. Zhukov A.V., Vereshchagin A.G Current techniques of extraction, purification and preliminary fractionation of polar lipids of natural origin // Adv Lipid Res. 1981. Vol. 18. P. 247-282
3. Бережная, Г.А. Определение жирнокислотного состава и количественного содержания липидов в плодах облепихи / Г.А. Бережная, И.П. Елисеев, В.Д. Цыдендамбаев, А.Г. Верещагин // Прикл. биохимия и микробиология. – 1988. –Т. 24. – С. 568–573.
4. Пчелкин, В.П. Определение позиционно-видового состава запасных триацилглицеринов растений методом неполного химического деацилирования / В.П. Пчелкин, Э.И. Кузнецова, В.Д. Цыдендамбаев, А.Г. Верещагин // Физиология растений. – 2001. – Т. 48. – C. 809-816.
5. Tsydendambaev V.D., Christie W.W., Brechany E.Y., Vereshchagin A.G. Identification of Unusual Fatty Acids of Four Alpine Plant Species from the Pamirs //Phytochemistry. 2004. V.65, p. 2695-2703

Spectrometrist
Пользователь
Ранг: 777


18.01.2011 // 1:50:13     
Редактировано 1 раз(а)


OYura пишет:
Работаю на ГХ Кристалл 2000М, капиллярная колонка НР 52 м. Определяю жирные кислоты в маслах.
Необходимо провести анализ ЖК в мембранах клеток. Такого никогда не делал .
Как правильно провести экстракцию? Может у кого есть методики по этому поводу. Помогите пожалуйста.


Вы хотите ЖК в мембранных липидах, или свободные ЖК в мембранах, если таковые найдутся?

Если экстрагировать липиды, то классика:

Bligh EG, Dyer WJ: A rapid method of total lipid extraction and purification. Can J Biochem Physiol 1959, 37:911-917.

Folch JM, Lees, M., Sloane-Stanley, G. H.: A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissue. J Biol Chem 1957, 226:497-509.

Эти две статьи типа "golden standard", но в наших руках Folch работает лучше.

Довольно удачный "упрощенный" метод с MTBE:

Matyash V, Liebisch G, Kurzchalia TV, Shevchenko A, Schwudke D: Lipid extraction by methyl-tert-butyl ether for high-throughput lipidomics. J Lipid Res 2008, 49:1137-1146.

В принципе, экстрагируется все кроме гликолипидов, но эти надо делать в зависимости от того что а клетки. Ну и конечно PIP / PIP2 / PIP3 вообще делаются по другому, это вообще другой мир.
Каталог ANCHEM.RU
Администрация
Ранг: 246
Испытательный центр ФГУ «Балтийская дирекция по техническому обеспечению надзора на море» Испытательный центр ФГУ «Балтийская дирекция по техническому обеспечению надзора на море»
Федеральное государственное учреждение «Балтийская дирекция по техническому обеспечению надзора на море» создано в соответствии с распоряжением Правительства Российской Федерации и осуществляет свою деятельность на территории Российской Федерации, во внутренних морских водах, территориальном море, в исключительной экономической зоне и на континентальном шельфе Российской Федерации.
Chamomillablue
Пользователь
Ранг: 1302


18.01.2011 // 1:56:46     

Spectrometrist пишет:

OYura пишет:
Работаю на ГХ Кристалл 2000М, капиллярная колонка НР 52 м. Определяю жирные кислоты в маслах.
Необходимо провести анализ ЖК в мембранах клеток. Такого никогда не делал .
Как правильно провести экстракцию? Может у кого есть методики по этому поводу. Помогите пожалуйста.

Вы хотите ЖК в мембранных липидах, или свободные ЖК в мембранах, если таковые найдутся?

Если экстрагировать липиды, то классика:

Bligh EG, Dyer WJ: A rapid method of total lipid extraction and purification. Can J Biochem Physiol 1959, 37:911-917.

Folch JM, Lees, M., Sloane-Stanley, G. H.: A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissue. J Biol Chem 1957, 226:497-509.

Эти две статьи типа "golden standard", но в наших руках Folch работает лучше.

Довольно удачный "упрощенный" метод с MTBE:

Matyash V, Liebisch G, Kurzchalia TV, Shevchenko A, Schwudke D: Lipid extraction by methyl-tert-butyl ether for high-throughput lipidomics. J Lipid Res 2008, 49:1137-1146.

В принципе, экстрагируется все кроме гликолипидов, но эти надо делать в зависимости от того что а клетки. Ну и конечно PIP / PIP2 / PIP3 вообще делаются по другому, это вообще другой мир.


СЖК в мембранах - ошибка исследователя, но не природы ) не может их там быть... СЖК в растительной клетке вообще ОЧЕНЬ большая редкость.. чаще артефакт..
Chamomillablue
Пользователь
Ранг: 1302


18.01.2011 // 2:13:03     
А, вот еще вспомнил, для ГЖХ анализа MEFA неплохо бы провести калибровку хроматографа с помощью готовых стандартов - смеси метиловых эфиров главных кислот с заведомо известной концентрацией и сравнить полученные данные с помощью ГЖХ путем интеграции пиков - так вы сможете вывести поправочные коэффициенты...
Подробнее можно почитать у Cristie или у Пчелкина В.П. в работе "Распределение необычных жирных кислот в триацилглицеринах масла околоплодника облепихи" (Физиология растений, 2006, том. 53 №3)
LVD
Пользователь
Ранг: 219


18.01.2011 // 8:40:23     
to Chamomillablue
По-видимому, Вы один из соавторов вышеуказанного ( с аппаратом Жукова) метода?
Я думаю, что это один из возможных методов. И Кристи и блай и Дайер и современные группы исследователей в США, в Великобритании, наши во Владивостоке, обходятся без 2стадийной экстракции и выход липидов (у Владивостокцев, по крайней мере, то что я знаю) высокий 97-98%.
Что касается свободных жирных кислот в растительной клетке, то они там появляются как в результате работы фосфолипазы А, активируемой кальцием, так и в результате ПОЛ.
OYura
Пользователь
Ранг: 45


18.01.2011 // 13:10:29     
Большое спасибо.
Хроматограф откалиброван стандартной смесью метиловых эфиров. Калибровка, да и вся работа (с маслами) проводилась в растворах гексана (он первый вылетает с колонки и его пик не накладывается на пики метиловых эфиров). Пробоподготовка несложная: капля масла в 2 мл гексана, плюс 0,2 мл метилата натрия, на фильтр и готово. Анализ проводится методом внутренней нормализации: все пики 100% и соответственно по компонентах.
Необходимо провести анализ жирнокислотного состава мембран эритроцитов (они уже выделены и заморожены). Еще предстоит пересылка (4 часа).
Может пусть их сразу на месте проэкстрагируют смесью хлороформ: метанол:вода (какое соотношение?)?
Дальше метелирование просто в этой системе и на хроматограф?
Ионола у них нет пока, может какой-нибудь другой антиоксидант можно применить?
Для начала хотелось бы попроще.
Подробности очень интересуют и фракционирование хотелось бы поставить в ближайшем будущем.
Chamomillablue
Пользователь
Ранг: 1302


18.01.2011 // 18:09:55     
Редактировано 2 раз(а)


LVD пишет:
to Chamomillablue
По-видимому, Вы один из соавторов вышеуказанного ( с аппаратом Жукова) метода?
Я думаю, что это один из возможных методов. И Кристи и блай и Дайер и современные группы исследователей в США, в Великобритании, наши во Владивостоке, обходятся без 2стадийной экстракции и выход липидов (у Владивостокцев, по крайней мере, то что я знаю) высокий 97-98%.
Что касается свободных жирных кислот в растительной клетке, то они там появляются как в результате работы фосфолипазы А, активируемой кальцием, так и в результате ПОЛ.

Нет, я не являюсь соавтором. Просто на первых этапах работы пользовался этим методом и он оказался очень удобным для количественной экстракции, когда необходимо проанализировать все классы липидов, особенно полярных.
Сейчас мы от этого метода отказались, так как липиды мембран нас не интересуют и пользуемся сокращенной методикой экстракции абсолютным хлороформом в делительной воронке с водой. Водная фаза позволяет дополнительно отделить экстракт от углеводов и некоторых протеинов и прочих гидрофильных компонентов.
Одной из причин, по которой пришлось перейти на "безметанольную" экстракцию стало то, что в нашем объекте, видимо, существуют ферменты, сохраняющие активность после замораживания ткани и ее фиксации в кипящей воде. Эти ферменты этерифицировали ЖК с образованием комплекса МЕ-эфиров даже при комнатной температуре и пониженной, за счет тока аргона, испаряющего из экстрактора хлороформ, и всего за 2-3 часа. Признаюсь, такую ферментативную активность мы наблюдали впервые..

P.S. сколько на своей памяти не анализировал растительные экстракты, СЖК не встречал. Были один раз, но это оказалось ошибкой пробоподготовки и длительного хранения экстракта в изопропаноле, в результате чего разрушились триацилглицерины и дали эти СЖК.

  Ответов в этой теме: 13
  Страница: 1 2
  «« назад || далее »»

Ответ на тему


ААС, ИСП-АЭС, ИСП-МС - прямые поставки в 2022 году

ПОСЛЕДНИЕ НОВОСТИ ANCHEM.RU:      [ Все новости ]


ЖУРНАЛ ЛАБОРАТОРИИ ЛИТЕРАТУРА ОБОРУДОВАНИЕ РАБОТА КАЛЕНДАРЬ ФОРУМ

Copyright © 2002-2022
«Аналитика-Мир профессионалов»

Размещение рекламы / Контакты